{"id":434,"date":"2025-07-21T14:27:08","date_gmt":"2025-07-21T17:27:08","guid":{"rendered":"https:\/\/departamentos.uel.br\/medicina-veterinaria-preventiva\/?page_id=434"},"modified":"2026-04-27T13:56:56","modified_gmt":"2026-04-27T16:56:56","slug":"portal-patologia-animal","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/departamentos.uel.br\/medicina-veterinaria-preventiva\/portal-patologia-animal\/","title":{"rendered":"DMVP – Laborat\u00f3rios"},"content":{"rendered":"\n
\n
Patologia Animal<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docentes:<\/strong>
Prof\u00aa. Dr\u00aa. Ana Paula F.R.L.Bracarense
Prof\u00aa. Dr\u00aa. Giovana Wingeter Di Santis
Prof. Dr. Selwyn Arlington Headley<\/p>\n\n\n\n

M\u00e9dica Veterin\u00e1ria:<\/strong> Claudia Cristina Boselli
Fone:\u00a0(43) 3371-4062<\/p>\n\n\n\n

T\u00e9cnico de Laborat\u00f3rio:<\/strong> R\u00f4mulo Jord\u00e3o Neves Aroucha<\/p>\n\n\n\n

Exames oferecidos<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Necr\u00f3psia completa de grandes e pequenos animais.
Exame Citol\u00f3gico: \u00e9 a an\u00e1lise das c\u00e9lulas obtidas de aspirado, decalque ou lavado traqueal.
Exame Histopatol\u00f3gico: \u00e9 a an\u00e1lise das altera\u00e7\u00f5es teciduais dos \u00f3rg\u00e3os.
Exame Imunohistoqu\u00edmico: a consultar.<\/p>\n\n\n\n

Colheita e conserva\u00e7\u00e3o do material<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Exame Citol\u00f3gico<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Pun\u00e7\u00e3o de l\u00edquido<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Colheita: aspirar com agulha + seringa e colocar algumas gotas na l\u00e2mina e realizar o esfrega\u00e7o.
Conserva\u00e7\u00e3o: secar bem e colocar \u00e1lcool absoluto ou met\u00edlico por 1 minuto.
Envio ao laborat\u00f3rio: tomar cuidado para que o esfrega\u00e7o n\u00e3o seja retirado. Colocar palitos de f\u00f3sforo na extremidade da l\u00e2mina, de modo que os esfrega\u00e7os externos fiquem voltados para a por\u00e7\u00e3o interna. Passar esparadrapo na mesma altura dos palitos.<\/p>\n\n\n\n

Pun\u00e7\u00e3o de massa de n\u00f3dulo<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Colheita: evitar aspirado de locais onde a consist\u00eancia \u00e9 flutuante. Quando ulcerado, o aspirado deve ser realizado pelo lado n\u00e3o ulcerado assim evitando falso positivo. Com uma agulha 25 x 6 mm, acoplado a uma seringa de 5 a 10ml (melhor de 10 pois a press\u00e3o negativa \u00e9 maior) introduzir na massa ou n\u00f3dulo, fazer press\u00e3o negativa no embolo e realizar movimento em v\u00e1rias dire\u00e7\u00f5es (em leque). Retornar o \u00eambolo \u00e0 posi\u00e7\u00e3o inicial, devagar, de modo que o material aspirado muitas vezes localizado somente na agulha, n\u00e3o retorne para a massa. Com a agulha fora da massa, desacoplar, encher a seringa com ar e acoplar novamente. Posicionando o material na agulha deposite na l\u00e2mina. Colocar outra l\u00e2mina, sobre o material, de forma perpendicular e realizar o esfrega\u00e7o.<\/p>\n\n\n\n

Imprint ou decalque<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Colheita: o local onde ser\u00e1 realizado o decalque n\u00e3o deve ter excesso de sangue. Enxugar com papel toalha e depois encostar a l\u00e2mina fazendo uma leve press\u00e3o.
Conserva\u00e7\u00e3o e envio ao laborat\u00f3rio: idem a Pun\u00e7\u00e3o de l\u00edquido.<\/p>\n\n\n\n

Lavado traqueal<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Colheita: se o material for claro, colocar em um tubo e centrifugar. Se formar precipitado, desprezar o sobrenadante de modo que sobre um pouco para diluir o precipitado. Com uma seringa coletar o material e deposit\u00e1-lo em uma l\u00e2mina e realizar o esfrega\u00e7o.<\/p>\n\n\n\n

Obs.: os materiais utilizados par a colheita do material deve ser bem limpa.<\/p>\n\n\n\n

N\u00e3o esquecer de identificar o material.
Enviar junto ficha completa com os dados do animal (nome, esp\u00e9cie, ra\u00e7a, idade, sexo) e descri\u00e7\u00e3o da les\u00e3o (localiza\u00e7\u00e3o, tamanho, forma, consist\u00eancia, evolu\u00e7\u00e3o, ulcerada ou n\u00e3o e outras caracter\u00edstica, se necess\u00e1rio).<\/p>\n\n\n\n

Exame Histopatol\u00f3gico<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Colheita: os \u00f3rg\u00e3os a serem colhidos devem ser cortados em fragmentos (\u00b1 2 x 2 x 2 cm).
N\u00e3o colher somente a les\u00e3o, mas a jun\u00e7\u00e3o da \u00e1rea normal e alterada. Os \u00f3rg\u00e3os ocos devem ser amarrados nas extremidades (\u00b1 5 cm comprimento) e infetar formol no interior. Se poss\u00edvel, os fetos abortados, devem ser enviados intactos sob refrigera\u00e7\u00e3o.
Conserva\u00e7\u00e3o: refrigera\u00e7\u00e3o (n\u00e3o congelar). Formol 10% tamponado. O volume deve ser 10 x a quantidade do material.
Envio ao laborat\u00f3rio: o material refrigerado deve ser enviado o mais r\u00e1pido poss\u00edvel, neste caso, o ideal \u00e9 enviar os \u00f3rg\u00e3os interior junto com gelo dentro de um isopor. Os materiais contidos em formol devem estar em fechado par evitar vazamentos e posterior deteriora\u00e7\u00e3o.<\/p>\n\n\n\n

Obs.: n\u00e3o esquecer de identificar o material. Enviar dados e anamnase completa do animal, inclusive do rebanho (se necess\u00e1rio).<\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Bacteriologia<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docente:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Prof. Dr. Ulisses de Padua Pereira
Prof\u00aa. Dr\u00aa. Alais Maria Dall Agnol
Prof\u00aa. Dr\u00aa. Maisa Fabiana Menck Costa<\/p>\n\n\n\n

T\u00e9cnicos de Laborat\u00f3rio:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Lucimara Aparecida Alves
Hamilton de Oliveira
Fone: (43) 3371-4259<\/p>\n\n\n\n

Exames oferecidos:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

1 – cultura e antibiograma (material: leite, fragmento de \u00f3rg\u00e3os, urina, fezes etc.).
2 – cultura de Mycoplasma<\/em> (material: leite, “swab” e secre\u00e7\u00f5es nasal e vaginal)
      Respons\u00e1vel: Med. Vet. Dr\u00aa. Lucienne Garcia Pretto Giordano
3 – Sorologia para Brucelose (soro).
4- Diagn\u00f3stico de mastite (bovina, ovina etc)
Quanto coletar? Uma al\u00edquota de 2 \u2013 3ml de leite, identificar o tubo com o nome ou o n\u00famero do animal e o teto do qual foi coletado.
Como proceder a coleta? Lavar com \u00e1gua o teto afetado, sec\u00e1-lo com papel toalha, desinfetar com \u00e1lcool iodado e posteriormente com \u00e1lcool 70\u00ba o teto (e o esf\u00edncter do teto com algod\u00e3o embebido com \u00e1lcool 70\u00ba) e a m\u00e3o do ordenhador ou veterin\u00e1rio, desprezar os tr\u00eas primeiros jatos e coletar 2 \u2013 3 ml de leite em tubo de rosca est\u00e9ril.
Como armazenar e enviar ao laborat\u00f3rio? Quando enviar imediatamente ou at\u00e9 2 (duas) horas ap\u00f3s a colheita n\u00e3o h\u00e1 necessidade de resfriamento. De 2 (duas) a 12 (doze) horas ap\u00f3s a colheita as amostras dever\u00e3o ser resfriadas e com mais de 12 (doze) horas as amostras dever\u00e3o ser congeladas.<\/p>\n\n\n\n

Cuidados:<\/p>\n\n\n\n

– Trazer as amostras acondicionadas de maneira que as mesmas fiquem em p\u00e9, para que o leite n\u00e3o toque a tampa;
– N\u00e3o coletar amostras de animais em tratamento;
– Parar o tratamento com antibi\u00f3tico no m\u00ednimo por tr\u00eas dias consecutivos para realizar a colheita da amostra (tanto antibi\u00f3tico local quanto o injet\u00e1vel).
Tempo para identifica\u00e7\u00e3o e antibiograma: 1 semana.<\/p>\n\n\n\n

5 – Otite, Metrite e outras \u2013 material: secre\u00e7\u00f5es
Como coletar? Limpar e desinfetar a regi\u00e3o externa e proceder a colheita do material atrav\u00e9s de “swab” est\u00e9ril;
Abcessos: material deve ser colhido atrav\u00e9s de seringa est\u00e9ril.
\u00d3rg\u00e3os: coletar fragmento do \u00f3rg\u00e3o afetado e acondicionar em placas de petri ou frasco est\u00e9ril.
Como coletar? Coletar fragmentos de 100 \u2013 150 gr com material cir\u00fargico est\u00e9ril e acondicion\u00e1-los em placas de petri est\u00e9reis ou ainda em saco pl\u00e1stico, sendo v\u00e1rios \u00f3rg\u00e3os acondicion\u00e1-los separadamente e mandar resfriado.<\/p>\n\n\n\n

6- Fezes<\/p>\n\n\n\n

Como coletar? Coletar em tubos est\u00e9reis ou com “swab” est\u00e9reis e enviar ao laborat\u00f3rio resfriado. Quando material de necr\u00f3psia, mandar um fragmento de al\u00e7a intestinal devidamente amarradas as extremidades com barbante e enviar resfriada.<\/p>\n\n\n\n

7 – Urina<\/p>\n\n\n\n

Como coletar? Coletar em seringa est\u00e9ril atrav\u00e9s de cistocentese, trazer ao laborat\u00f3rio na pr\u00f3pria seringa com a agulha vedada, resfriada e no m\u00e1ximo at\u00e9 2(duas) horas ap\u00f3s a colheita.<\/p>\n\n\n\n

8 – Brucelose: material soro sangu\u00edneo<\/p>\n\n\n\n

Qual a quantidade de soro? 1 ml de soro resfriado ou congelado.
Cuidados:<\/p>\n\n\n\n

– Coletar o sangue e deix\u00e1-lo inclinado em local fresco at\u00e9 formar o co\u00e1gulo;
– Separar o soro de forma que n\u00e3o ocorra hem\u00f3lise;
– N\u00e3o deixar mais que dois dias o soro no co\u00e1gulo, para que n\u00e3o ocorra contamina\u00e7\u00e3o;
– Quando trouxer o soro no co\u00e1gulo, tomar cuidado no transporte para n\u00e3o ocorrer hem\u00f3lise e traz\u00ea-lo resfriado, nunca congelado;
– Soro resfriado: at\u00e9 dois dias ap\u00f3s separa\u00e7\u00e3o do co\u00e1gulo;
– Soro congelado: quando demorar mais que dois dias para trazer para o laborat\u00f3rio.<\/p>\n\n\n\n

9 – Diagn\u00f3stico de bacterioses de peixes:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Exames realizados:
– Cultura
– Antibiograma
– Rea\u00e7\u00e3o de PCR espec\u00edfica para detec\u00e7\u00e3o dos principais pat\u00f3genos de peixes
– Material a ser enviado: peixes vivos ou peixes refrigerados segundo o Manual de Coleta e Remessa de Amostras para Diagn\u00f3stico de Enfermidades de Animais Aqu\u00e1ticos (http:\/\/www.mpa.gov.br\/files\/docs\/Monitoramento_e_Controle\/sanidade_pesqueira)<\/p>\n\n\n\n

SEMPRE LIGAR UM OU DOIS DIAS ANTES DA COLETA PARA RECEBER AS INSTRU\u00c7\u00d5ES DETALHADAS DE COLETA, FORMA DE PAGAMENTO E REMESSA DO MATERIAL.<\/p>\n\n\n\n

No caso de enviar os animais vivos, os animais devem estar acondicionados em sacos pl\u00e1sticos com \u00e1gua e oxig\u00eanio.
Devem ser enviados os animais VIVOS com sinais cl\u00ednicos evidentes e peixe com quadro cl\u00ednico mais brando (in\u00edcio de infec\u00e7\u00e3o). NUNCA COLETAR PEIXES MORTOS PARA AN\u00c1LISE LABORATORIAL.
Enviar anamnese e dados da propriedade (tipo de cria\u00e7\u00e3o, qualidade da \u00e1gua, temperatura da \u00e1gua etc.).
Ligar no laborat\u00f3rio antes de enviar os animais (43) 3371-4259 – Falar com Lucimara ou professor Ulisses<\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Inspe\u00e7\u00e3o de Leite e Derivados<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docentes:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Prof. Dr. Rafael Fagnani<\/p>\n\n\n\n

Prof\u00aa. Dr\u00aa. Elsa Helena Walter de Santana<\/p>\n\n\n\n

M\u00e9dico Veterin\u00e1rio:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Ronaldo Tamanini<\/p>\n\n\n\n

Fone: (43) 3371-5617<\/p>\n\n\n\n

Site do LIPOA: http:\/\/www.uel.br\/laboratorios\/inspecao\/portal\/<\/a><\/p>\n\n\n\n

Exames oferecidos<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

An\u00e1lise F\u00edsico-Qu\u00edmicas e Microbiol\u00f3gicas de Leite<\/p>\n\n\n\n

An\u00e1lises microbiol\u00f3gicas de Carnes e Derivado<\/p>\n\n\n\n

An\u00e1lises Microbiol\u00f3gicas de Queijos.<\/p>\n\n\n\n

Normas para colheita de amostras de leite pasteurizado e cru<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Leite cru:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Colher em frascos esterilizados, cerca de 500 ml;<\/p>\n\n\n\n

Etiquetar ou identificar data e local da colheita;<\/p>\n\n\n\n

Manter resfriado em isopor com gelo;<\/p>\n\n\n\n

N\u00e3o congelar a amostra.<\/p>\n\n\n\n

Leite pasteurizado:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Enviar ao laborat\u00f3rio um pacote (saquinho) de leite \u00edntegro;<\/p>\n\n\n\n

A amostra deve estar dentro do prazo de validade do produto;<\/p>\n\n\n\n

Manter resfriado em isopor com gelo;<\/p>\n\n\n\n

N\u00e3o congelar a amostra.<\/p>\n\n\n\n

Alimentos s\u00f3lidos no m\u00ednimo 100 gramas<\/p>\n\n\n\n

OBS.: Presta\u00e7\u00e3o de servi\u00e7os a consumidores, ind\u00fastrias e \u00f3rg\u00e3os p\u00fablicos.<\/strong><\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Leptospirose<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docente:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Prof\u00aa. Dr\u00aa. Lucienne Garcia Pretto Giordano<\/p>\n\n\n\n

T\u00e9cnico de Laborat\u00f3rio:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Cristiane da Silva<\/p>\n\n\n\n

Fone: (043) 3371-4708<\/p>\n\n\n\n

e-mail: leptouel@gmail.com<\/a><\/p>\n\n\n\n

Exames oferecidos: Soroaglutina\u00e7\u00e3o microsc\u00f3pica<\/strong><\/p>\n\n\n\n

                                    Exame direto da urina (Campo Escuro)<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Material a ser enviado ao laborat\u00f3rio:<\/p>\n\n\n\n

Sorologia<\/strong>: sangue sem anticoagulante refrigerado ou soro congelado, acondicionada em frasco est\u00e9ril.<\/p>\n\n\n\n

Volume sang\u00fc\u00edneo (m\u00ednimo): 5ml<\/p>\n\n\n\n

Volume de soro (m\u00ednimo): 1ml<\/p>\n\n\n\n

Exame direto da urina (campo escuro)<\/strong>: a urina ap\u00f3s ser colhida por cistocentese ou sonda deve ser acondicionada em frasco est\u00e9ril e ser enviada ao laborat\u00f3rio no prazo m\u00e1ximo de 20 (vinte) minutos.<\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Medicina Avi\u00e1ria<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docente: <\/strong>Prof\u00aa. Dr\u00aa. Ana Angelita Sampaio Baptista<\/p>\n\n\n\n

Auxiliar de Laborat\u00f3rio: <\/strong>La\u00e9rcio da Silva<\/p>\n\n\n\n

Residentes:  <\/strong><\/p>\n\n\n\n

R1 – Ana Paula Muller Fernandes<\/p>\n\n\n\n

R2 – Maria Fernanda Marques Pilli<\/p>\n\n\n\n

Telefone: (43) 3371-4067<\/p>\n\n\n\n

Para maiores informa\u00e7\u00f5es, clique no link abaixo:<\/p>\n\n\n\n

http:\/\/www.uel.br\/laboratorios\/lma\/<\/a><\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Micologia<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docente:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Prof\u00aa. Dr\u00aa. Lucienne Garcia Pretto Giordano<\/p>\n\n\n\n

T\u00e9cnica de Laborat\u00f3rio:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Eliana Celia Pereira<\/p>\n\n\n\n

E-mail do Laborat\u00f3rio: labmicologia.uel@gmail.com<\/a><\/p>\n\n\n\n

Fone(laborat\u00f3rio): (43) 3371.4708<\/p>\n\n\n\n

Suspeitas cl\u00ednicas e colheita adequada:<\/p>\n\n\n\n

Pele com descama\u00e7\u00e3o e seborr\u00e9ia<\/u><\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

a) se a les\u00e3o for na pele, fa\u00e7a a retirda das escamas de pele com swab da regi\u00e3o com les\u00f5es e coloque-o em recipiente devidamente est\u00e9ril e seco.<\/p>\n\n\n\n

b) Caso seja na orelha, mandar amostra do cerume em swab est\u00e9ril umedecido em solu\u00e7\u00e3o fisiol\u00f3gica. E outra amostra de cerume preparar esfrega\u00e7o em l\u00e2mina.<\/p>\n\n\n\n

c) Exame direto: colher o material em swab seco e fazer um esfrega\u00e7o.<\/p>\n\n\n\n

Pele com alopecia<\/u><\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Mandar amostra do pelo coletado nas bordas da les\u00e3o. O pelo deve ser puxado juntamente com a raiz. Antes da coleta, o local deve ser limpo com \u00e1lcool 70%, espere a regi\u00e3o secar. Os pelos devem ser armazenados em recipiente que evite umidade (papel), e mantidos refrigerados antes de enviar para o laborat\u00f3rio.<\/p>\n\n\n\n

Bovinos e ovinos com crostas elevadas<\/u><\/strong>:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Enviar crostas do local afetado armazenadas em recipientes que evite umidade.<\/p>\n\n\n\n

Mastite bovina<\/u><\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Enviar amostras de leite coletadas em frascos devidamente est\u00e9reis, contendo no m\u00e1ximo 2 ml em cada frasco. (tubo de rosca).<\/p>\n\n\n\n

Equinos e Bovinos<\/u><\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Ulcera\u00e7\u00f5es de pele colher como bi\u00f3psia a les\u00e3o endurecida amarelada, colocar em recipiente refrigerado.<\/p>\n\n\n\n

C\u00e3es e Gatos<\/u><\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Les\u00f5es ulceradas – swab \u00famido e est\u00e9ril da les\u00e3o.<\/p>\n\n\n\n

Outros tipos de amostras a ser examinada<\/u><\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

a) silagem: pacote contendo no m\u00ednimo 10g.<\/p>\n\n\n\n

b) pe\u00e7as: as pe\u00e7as devem ser armazenadas em recipientes est\u00e9ril: sem adi\u00e7\u00e3o de conservantes e mantido refrigerado.<\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Parasitologia<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docentes:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Prof. Dr. Jo\u00e3o Luis Garcia<\/p>\n\n\n\n

Prof. Dr. Fernando de Souza Rodrigues<\/p>\n\n\n\n

Prof\u00aa. Dr\u00aa. Amanda Fonseca Zangirolamo<\/p>\n\n\n\n

Prof\u00aa. Dr\u00aa. Fernanda Pinto Ferreira<\/p>\n\n\n\n

T\u00e9cnico de Laborat\u00f3rio:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Aldair Calistro de Matos <\/p>\n\n\n\n

Fone: (43) 3371-5956<\/p>\n\n\n\n

Endere\u00e7o para envio de Amostras:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Universidade Estadual de Londrina<\/p>\n\n\n\n

CCA – Departamento de Medicina Veterin\u00e1ria Preventiva<\/p>\n\n\n\n

LABORAT\u00d3RIO DE PARASITOLOGIA VETERIN\u00c1RIA<\/p>\n\n\n\n

Rodovia Celso Garcia Cid, PR 445 – Km 388<\/p>\n\n\n\n

Caixa Postal  10.011<\/p>\n\n\n\n

Londrina-PR                 CEP: 86.057-970 <\/p>\n\n\n\n

Contas para pagamento:<\/p>\n\n\n\n

Banco Ita\u00fa – ag\u00eancia 4113 conta 01698-6<\/p>\n\n\n\n

Banco do Brasil – ag\u00eancia 2755 – conta 20492-0<\/p>\n\n\n\n

Exames oferecidos:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

M\u00e9todos utilizados para pequenos animais e su\u00ednos<\/p>\n\n\n\n

Willis \/ Mollay<\/p>\n\n\n\n

Faust (giardia e amebas)<\/p>\n\n\n\n

Sheather (oocisto de coccideos)<\/p>\n\n\n\n

Hoffman (Sedimenta\u00e7\u00e3o simples ou espont\u00e2nea.)<\/p>\n\n\n\n

Colheita fezes \u2013 colher diretamente do reto do animal, de 5 a 15 gr em sacos pl\u00e1sticos ou frascos de boca larga com tampas e identifica\u00e7\u00e3o individual.<\/p>\n\n\n\n

M\u00e9todos utilizados para grandes animais (bovinos, equinos, ovinos e caprinos)<\/p>\n\n\n\n

            Gordon e Whitlock (Mac. Master)<\/p>\n\n\n\n

            Baermann ou Ueno (Distyocaulus \/ Strongyl\u00f3ides)<\/p>\n\n\n\n

            Cultura de larvas de nemat\u00f3deos ou coprocultura<\/p>\n\n\n\n

Colheita fezes \u2013 colher diretamente do reto do animal de 20 a 50gr de fezes em sacos pl\u00e1stico ou luvas de palpa\u00e7\u00e3o com identifica\u00e7\u00e3o individual. Em se tratando de rebanho aconselha-se colher um n\u00ba. representativo, em torno de 10a<\/sup> 15 amostra de cada faixa et\u00e1ria.       <\/p>\n\n\n\n

Oocistograma \u2013 identifica\u00e7\u00e3o e quantifica\u00e7\u00e3o de esp\u00e9cies de cocc\u00eddios existentes em galp\u00f5es av\u00edcolas com forma de auxiliar o monitoramento da coccidiose.<\/p>\n\n\n\n

Colheita \u2013 colher amostras de cada galp\u00e3o ao redor de bebedouros e comedouros, estabelecendo um “pool” representativo do galp\u00e3o. Cada amostra colhida dever\u00e1 conter 3 a 5 gramas de fezes. Dever\u00e3o ser acondicionadas em sacos pl\u00e1sticos ou vidros de boca larga com tampa ou na pr\u00f3pria luva.<\/p>\n\n\n\n

Pesquisa e identifica\u00e7\u00e3o de ectoparasitas (sarnas):<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Colheita \u2013 para qualquer esp\u00e9cie, o material dever\u00e1 ser colhido das bordas das les\u00f5es, raspando vigorosamente o local at\u00e9 iniciar o sangramento. O material dever\u00e1 ser acondicionado em placas de petri ou frasco limpo de boca larga com tampa.<\/p>\n\n\n\n

Cerumem de ouvido, colher com cotonetes e acondicionar em placas de petri ou outro recipiente.<\/p>\n\n\n\n

Obs.: manter estes materiais com um chuma\u00e7o de algod\u00e3o \u00famido para evitar ressecamento.<\/p>\n\n\n\n

Identifica\u00e7\u00e3o de artr\u00f3podes:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Para a identifica\u00e7\u00e3o, os insetos dever\u00e3o estar \u00edntegros, ou seja, sem estar faltando partes do mesmo (cabe\u00e7a, patas, asas e outros) pois s\u00e3o elementos fundamentais na identifica\u00e7\u00e3o.<\/p>\n\n\n\n

Formas da colheita:<\/p>\n\n\n\n

Pulgas e piolhos – colheita direta do animal, com aux\u00edlio de um pincel umedecido ou pin\u00e7as de ponta fina, protegida com algod\u00e3o. Coloc\u00e1-los em frascos limpos e com tampa;<\/p>\n\n\n\n

Carrapatos \u2013 colheita manual sobre o animal e coloc\u00e1-los em frascos adequados com tampa;<\/p>\n\n\n\n

Moscas e mosquitos \u2013 usa-se redes e armadilhas para captur\u00e1-los, armazenando-os em frascos limpos e com tampa;<\/p>\n\n\n\n

Bicho-barbeiro \u2013 pegar com uma pin\u00e7a e colocar em frasco limpo;<\/p>\n\n\n\n

Outros como larva e berne pode ser retirado diretamente da les\u00e3o e acondicionada em frascos adequados com \u00e1lcool.<\/p>\n\n\n\n

O material dever\u00e1 ser enviado ao laborat\u00f3rio tomando bastante cuidado no transporte.<\/p>\n\n\n\n

PCR (<\/strong>Polymerase Chain Reaction<\/strong>):<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Exame utilizado para diagnostico de doen\u00e7as causadas por parasitas por meio da detec\u00e7\u00e3o da presen\u00e7a do DNA do agente causador atrav\u00e9s de t\u00e9cnicas de biologia molecular.<\/p>\n\n\n\n

Material: sangue conservado com anticoagulante (EDTA)<\/p>\n\n\n\n

Formas da colheita: Colher o sangue num tubo com anticoagulante (EDTA) tomando os seguintes cuidados:<\/p>\n\n\n\n

Durante a colheita deixar o sangue escorrer pela parede do tubo para evitar que as hem\u00e1cias se rompam.<\/p>\n\n\n\n

Homogeneizar (misturar) o sangue logo ap\u00f3s a colheita.<\/p>\n\n\n\n

Remessa de sangue ao laborat\u00f3rio:<\/p>\n\n\n\n

O tubo de sangue deve ser acondicionado e transportado em caixas de isopor bem fechado com gelo e de modo que n\u00e3o haja vazamentos.<\/p>\n\n\n\n

Agentes:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

– Anaplasma sp<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Anaplasma maginale<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Anaplasma Platys<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Babesia sp<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Babesia canis<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Babesia caballi<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Babesia bovis<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Babesia bigemina<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Ehrlichia canis<\/em><\/p>\n\n\n\n

– leishimania sp<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Mycoplasma sp<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Neospora canis<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Mycoplasma haemofelis<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Toxoplasma gondii<\/em><\/a><\/p>\n\n\n\n

– Trypanossoma sp<\/em><\/p>\n\n\n\n

– Theileria equi<\/em><\/p>\n\n\n\n

Obs:<\/strong> ser\u00e1 cobrado um exame pra cada agente, consultar disponibilidade do laborat\u00f3rio antes do envio de amostras atrav\u00e9s do telefone (43) 3371- 5956<\/p>\n\n\n\n

Protocolo para envio de amostra para Teste de Carrapaticida \u201cin vitro\u201d<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Leia atentamente as instru\u00e7\u00f5es:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Carrapatos:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

1 \u2013 Coletar carrapatos de animais que n\u00e3o receberam tratamento \u00e0 pelo menos 30 dias<\/strong>;<\/p>\n\n\n\n

2 \u2013 Os carrapatos devem ser coletados de tamanhos uniformes (coletando os maiores \u2013 \u201caspecto de jaboticaba\u201d) com cuidado para preservar a regi\u00e3o bucal intacta, preferencialmente de manh\u00e3, coletar fazendo uma rota\u00e7\u00e3o do carrapato para evitar que fique no animal a regi\u00e3o bucal;<\/p>\n\n\n\n

3 \u2013 Deve ser coletado um m\u00ednimo de 15 carrapatos ingurgitados (os maiores) por animal, num total de 150 a 200 carrapatos por propriedade;<\/p>\n\n\n\n

4 \u2013 Ap\u00f3s a coleta acondicionar em pote ou garrafas identificadas por propriedade, com furos pequenos para entrada de ar e armazenar na por\u00e7\u00e3o mais baixa da geladeira (refrigerar somente);<\/p>\n\n\n\n

5 \u2013 Enviar o quanto antes ao laborat\u00f3rio, sendo demorada a entrega pelos correios ou transportadora deve-se enviar em caixa de isopor os carrapatos com gelo recicl\u00e1vel;<\/p>\n\n\n\n

Princ\u00edpios Ativos:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

1 \u2013 Caso queira testar o produto utilizado na propriedade enviar uma amostra que d\u00ea para diluir em pelo menos 200ml de \u00e1gua (enviar a bula do produto), somente<\/strong> ser\u00e1 feito o teste para princ\u00edpios ativos que tem a\u00e7\u00e3o por contato (produtos de aspers\u00e3o), os princ\u00edpios ativos Pour-on e injet\u00e1veis<\/u><\/strong> n\u00e3o ser\u00e3o testados;<\/p>\n\n\n\n

2 \u2013 Evitar colocar os princ\u00edpios ativos na mesma caixa ou em contato com os carrapatos, se for enviar tudo no mesmo pacote sempre colocar os princ\u00edpios em embalagens lacradas;<\/p>\n\n\n\n

3 \u2013 Quando enviar o princ\u00edpio a ser testado somente com a bula, colocar este em uma embalagem que evite vazamento e mantenha a bula juntamente ao frasco devidamente identificado com o nome do princ\u00edpio ou produto, data de validade e n\u00famero de lote.<\/p>\n\n\n\n

OBS: – N\u00e3o ser\u00e1 feito o teste se as amostras (carrapatos e princ\u00edpios ativos) forem enviadas incorretamente;<\/strong><\/p>\n\n\n\n

– Se os carrapatos apresentarem postura de ovos n\u00e3o ser\u00e1 realizado o teste pois isso causar\u00e1 interfer\u00eancia no resultado do princ\u00edpio ativo;<\/strong><\/p>\n\n\n\n

– Princ\u00edpios ativos acondicionados em recipientes que n\u00e3o estiverem de acordo com o protocolo n\u00e3o ser\u00e3o testados;<\/strong><\/p>\n\n\n\n

– Princ\u00edpios ativos que n\u00e3o apresentarem as informa\u00e7\u00f5es necess\u00e1rias e fora da validade n\u00e3o ser\u00e3o testados.<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Esfrega\u00e7o sangu\u00edneo:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Material necess\u00e1rio:<\/p>\n\n\n\n

Colheita de sangue num tubo com anticoagulante (EDTA) tomando os seguintes cuidados:<\/p>\n\n\n\n

Durante a colheita deixar o sangue escorrer pela parede do tubo para evitar que as hem\u00e1cias se rompam.<\/p>\n\n\n\n

Homogeneizar (misturar) o sangue logo ap\u00f3s a colheita.<\/p>\n\n\n\n

Remessa de sangue ao laborat\u00f3rio:<\/p>\n\n\n\n

O tubo de sangue deve ser acondicionado e transportado em caixas de isopor bem fechado com gelo e de modo que n\u00e3o haja vazamentos.<\/p>\n\n\n\n

Quando houver a confec\u00e7\u00e3o do esfrega\u00e7o sangu\u00edneo de ponta de orelha ou total na propriedade, o mesmo dever\u00e1 ser remetido o mais r\u00e1pido poss\u00edvel (ap\u00f3s secas), enroladas em papel limpo e macio;<\/p>\n\n\n\n

N\u00e3o esquecer de identificar cada amostra;<\/p>\n\n\n\n

Falhas comumente cometidas na colheita de sangue:<\/p>\n\n\n\n

Uso de seringas ou agulhas molhadas ou \u00famidas causam hem\u00f3lise;<\/p>\n\n\n\n

Exame sorol\u00f3gico para Anaplasma spp., Babesia spp., Ehrlichia spp<\/em>., ou complexo Tristeza Parasit\u00e1ria Bovina ou Doen\u00e7a do Carrapato, Identifica\u00e7\u00e3o de microfil\u00e1rias<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Utiliza-se t\u00e9cnica de Imunofluoresc\u00eancia Indireta ou teste imunoesnzim\u00e1tico para detectar a presen\u00e7a de anticorpo no soro contra esses agentes.<\/p>\n\n\n\n

Material necess\u00e1rio:<\/p>\n\n\n\n

Colher no m\u00ednimo 5ml de sangue num tubo limpo e seco, sem anticoagulante e com tampa;<\/p>\n\n\n\n

Enviar ao laborat\u00f3rio com identifica\u00e7\u00e3o;<\/p>\n\n\n\n

Tomar cuidado com o transporte.<\/p>\n\n\n\n

Obs.; confirma\u00e7\u00e3o de Dirofil\u00e1ria positivo no sorol\u00f3gico, realizar o teste de KNOTT modificado. Para este exame \u00e9 necess\u00e1rio sangue com heparina.<\/p>\n\n\n\n

“in print” ou impress\u00e3o de tecidos:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Alguns parasitos podem ser identificados atrav\u00e9s desta t\u00e9cnica como a Babesia bovis, um dos agentes da Tristeza Parasit\u00e1ria Bovina que se situa em capilares. Peda\u00e7os de \u00f3rg\u00e3o s\u00e3o comprimidos levemente contra uma l\u00e2mina, corado e visualizado no microsc\u00f3pio.<\/p>\n\n\n\n

Material necess\u00e1rio:<\/p>\n\n\n\n

Os principais \u00f3rg\u00e3os usados na t\u00e9cnica s\u00e3o os parenquimatosos com f\u00edgado, ba\u00e7o, c\u00e9rebro, pulm\u00f5es e rins. Devem ser armazenados refrigerados e enviados, dentro de caixas de isopor com gelo, mais r\u00e1pido poss\u00edvel.<\/p>\n\n\n\n

Necropsia parasitol\u00f3gica:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

\u00d3rg\u00e3os \u2013 maior \u00eanfase ao sistema digestivo (helmintos) e tamb\u00e9m trato respirat\u00f3rio (vermes pulmonares). Para Dirofil\u00e1rias, envio de sistema c\u00e1rdio-vascular. Ou tamb\u00e9m o animal poder\u00e1 ser enviado para necrospsia parasitol\u00f3gica.<\/p>\n\n\n\n

Qualquer que seja o material dever\u00e1 ser identificado individualmente, acondicionar em caixas t\u00e9rmicas (isopor, collers) com gelo e transportado o mais r\u00e1pido poss\u00edvel para o laborat\u00f3rio.<\/p>\n\n\n\n

Se for usado gelo comum coloca-se em saquinhos pl\u00e1sticos, bem amarrados, evitando molhar o material.<\/p>\n\n\n\n

Obs.: quando n\u00e3o existir a possibilidade de transporte imediato do material, manter em refrigera\u00e7\u00e3o e n\u00e3o congelar.<\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Patologia Cl\u00ednica<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docentes:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Prof\u00aa.Dr\u00aa. Karina Keller Marques da Costa Flaiban<\/p>\n\n\n\n

Prof\u00aa. Dr\u00aa. Amanda Lopes Hasuda<\/p>\n\n\n\n

T\u00e9cnicos de Laborat\u00f3rio do Hospital Veterin\u00e1rio: <\/strong><\/p>\n\n\n\n

In\u00eas de F\u00e1tima Germano<\/p>\n\n\n\n

Jos\u00e9 Roberto Campos de Magalh\u00e3es<\/p>\n\n\n\n

Fone: (43) 3371-4379<\/p>\n\n\n\n

Exame<\/strong><\/td>Amostra<\/strong><\/td>Anticoagulante<\/strong><\/td>Quant. ml (m\u00ednima)<\/strong><\/td>Observa\u00e7\u00f5es<\/strong><\/td><\/tr>
Albumina<\/td>Soro\/plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Amilase<\/td>Soro<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Bilirrubinas<\/td>Soro\/plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Colesterol<\/td>Soro<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Creatinina<\/td>Plasma\/urina<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
C\u00e1lcio<\/td>Soro\/plasma\/urina<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Magn\u00e9sio<\/td>Soro\/plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Fibrinog\u00eanio<\/td>Sangue total<\/td>EDTA<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Fosfatase alcalina<\/td>Soro\/plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Glicose<\/td>Plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Ur\u00e9ia<\/td>Soro\/plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Transaminase Pir\u00favica (ALT)<\/td>Soro\/plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Transaminase oxalac\u00e9tica (TGO)<\/td>Soro\/plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Gama GT<\/td>Soro\/plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Prote\u00ednas totais<\/td>Soro\/plasma<\/td>Heparina<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Teste de toler\u00e2ncia de glicose com 6 amostras<\/td>Plasma<\/td>Fluoreto de s\u00f3dio<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Eritrograma<\/td>Sangue total<\/td>EDTA<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Hemograma<\/td>Sangue total<\/td>EDTA<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Hemat\u00f3crito<\/td>Sangue total<\/td>EDTA<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Leucograma<\/td>Sangue total<\/td>EDTA<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Liquor<\/td>–<\/td>–<\/td>M\u00e1ximo poss\u00edvel<\/td>Recipiente limpo<\/td><\/tr>
Plaquetas<\/td>Sangue total<\/td>EDTA<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Reticul\u00f3citos<\/td>Sangue total<\/td>EDTA<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Urin\u00e1lise<\/td>Urina<\/td>–<\/td>10 ml<\/td>Recipiente limpo<\/td><\/tr>
VHS<\/td>Sangue total<\/td>EDTA<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
An\u00e1lise de l\u00edquidos<\/td>Peritoneal, sinovial, ascit\u00edco<\/td>–<\/td>M\u00e1ximo poss\u00edvel<\/td>Esfrega\u00e7o<\/td><\/tr>
Aspirado de medula \u00f3ssea<\/td>Sangue total<\/td>Sem anticoagulante<\/td>5 l\u00e2minas<\/td>Esfrega\u00e7o<\/td><\/tr>
Prova de rea\u00e7\u00e3o cruzada<\/td>Sangue total<\/td>EDTA<\/td>5ml<\/td>Tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr>
Pesquisa de c\u00e9lulas L.E.<\/td>Soro<\/td>Sem anticoagulante<\/td>10 ml<\/td>Coleta em tubo \u00e0 v\u00e1cuo<\/td><\/tr><\/tbody><\/table><\/figure>\n\n\n\n

Obs.: maiores informa\u00e7\u00f5es sobre o tempo de execu\u00e7\u00e3o dos exames relacionados poder\u00e3o ser obtidas atrav\u00e9s do telefone acima. As amostras relacionadas dever\u00e3o ser enviadas ao laborat\u00f3rio logo ap\u00f3s a coleta em recipiente refrigerado, n\u00e3o congelar amostras sem centrifugar para evitar uma poss\u00edvel hem\u00f3lise.<\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Protozoologia<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docentes:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Prof. Dr. Jo\u00e3o Luis Garcia<\/p>\n\n\n\n

T\u00e9cnica de Laborat\u00f3rio:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Beatriz de Souza Lima Nino <\/p>\n\n\n\n

 Fone: (43) 3371-5958<\/p>\n\n\n\n

Pesquisa Tristeza Parasit\u00e1ria Bovina<\/strong> \u2013 Babesia bigemina, B.bovis <\/em>e Anaplasma marginale.<\/em><\/p>\n\n\n\n

Sorologia<\/strong> (material soro): Imunofluresc\u00eancia indireta ou ELISA ou cELISA en<\/p>\n\n\n\n

Soro: 1 a 2 ml refrigerado, se colhido no dia, ou congelado;<\/p>\n\n\n\n

PCR<\/strong> (material sangue com EDTA): 10 ml de sangue total colhido com EDTA, colhido no dia e mantido sob refrigera\u00e7\u00e3o.<\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Toxicologia<\/strong><\/div><\/summary>
\n

***Informamos que por prazo indeterminado, n\u00e3o estaremos recebendo amostras para an\u00e1lises toxicol\u00f3gicas***<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Docentes:\u00a0Prof\u00aa. Dr\u00aa. Laura Fernanda Condota Borba de Souza<\/p>\n\n\n\n

Fone: <\/strong>(43) 3371-5616<\/strong><\/p>\n\n\n\n

E-mail: <\/strong>lab.toxicologiaveterinaria@uel.br<\/a><\/p>\n\n\n\n

1.      AN\u00c1LISES E AMOSTRAS: <\/p>\n\n\n\n

     a.    Organofosforados e carbamatos por HPLC<\/strong>\u2013 sangue, f\u00edgado, isca ambiental, rim e conte\u00fado estomacal.<\/p>\n\n\n\n

                    i. Carbamatos \u2013 aldicarbe, propoxur, carbofuran, carbaril<\/p>\n\n\n\n

                    ii. Organofosforado \u2013 monocrotof\u00f3s, dimetoato e dicl\u00f3rvos<\/p>\n\n\n\n

b.   Cumar\u00ednicos por HPLC<\/strong>\u2013 sangue, f\u00edgado, isca ambiental, rim e conte\u00fado estomacal.<\/p>\n\n\n\n

                     i. Varfarina, bromadiolona, brodifacum<\/p>\n\n\n\n

2.      ORIENTA\u00c7\u00d5ES SOBRE ENVIO DE AMOSTRAS: (clique aqui)<\/strong><\/a><\/p>\n\n\n\n

          * Amostras enviadas incorretamente n\u00e3o poder\u00e3o ser analisadas.<\/strong><\/p>\n\n\n\n

3.      INFORMA\u00c7\u00d5ES ADICIONAIS NECESS\u00c1RIAS:<\/p>\n\n\n\n

a.       Preencher o documento (clique aqui)<\/a><\/strong> e enviar junto com as amostras.<\/p>\n\n\n\n

b.      Enviar o laudo de necropsia por e-mail<\/strong> (digi<\/a>talizado \/ fotografado).<\/p>\n\n\n\n

c.<\/strong>       No caso de d\u00favida quanto aos exames, consulte o laborat\u00f3rio.<\/strong><\/p>\n\n\n\n

4.      CONSIDERA\u00c7\u00d5ES GERAIS<\/p>\n\n\n\n

a.       Informar qual ou quais os agentes ou subst\u00e2ncias t\u00f3xicas a serem pesquisadas (suspeita);<\/p>\n\n\n\n

b.      Enviar material suficiente, para a repeti\u00e7\u00e3o das provas, se necess\u00e1rio;<\/p>\n\n\n\n

c.       Resfriar ou congelar o mais r\u00e1pido poss\u00edvel ap\u00f3s a colheita;<\/p>\n\n\n\n

d.      Evitar furos e vazamentos, fechando sempre que poss\u00edvel de maneira herm\u00e9tica e se necess\u00e1rio lacrar;<\/p>\n\n\n\n

e.       Identificar todo o material;<\/p>\n\n\n\n

f.    O laborat\u00f3rio n\u00e3o se responsabiliza com rela\u00e7\u00e3o a forma de envio da amostra, sendo problemas com correio e\/ou transportadora responsabilidade do solicitante. <\/p>\n\n\n\n

      g.        No caso de envolvimento legal (Justi\u00e7a), tomar precau\u00e7\u00e3o quanto a contamina\u00e7\u00e3o durante o envio ao laborat\u00f3rio e informar ao laborat\u00f3rio sobre as quest\u00f5es legais (boletim de ocorr\u00eancia, processos, entre outros). <\/p>\n\n\n\n

5.<\/strong>      CUSTOS<\/p>\n\n\n\n

a.      Carbamatos<\/strong> (Detec\u00e7\u00e3o de quatro compostos – Aldicarbe, Propoxur, Carbofuran e Carbaril)<\/p>\n\n\n\n

b.  Organofosforados <\/strong>(Detec\u00e7\u00e3o de tr\u00eas compostos – Monocrotof\u00f3s, Dimetoato, Diclorv\u00f3s)  <\/p>\n\n\n\n

c.<\/strong>      Compostos cumar\u00ednicos<\/strong> (Detec\u00e7\u00e3o de tr\u00eas compostos – Varfarina\/Warfarina, Bromadiolona, Brodifacoum) <\/p>\n\n\n\n

d. Carbamatos + organofosforados<\/strong> (Detec\u00e7\u00e3o de sete compostos – Aldicarbe, Propoxur, Carbofuran, Carbaril, Monocrotof\u00f3s, Dimetoato e Diclorv\u00f3s) <\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Virologia<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docentes:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Prof. Dr. Amauri Alcindo Alfieri<\/p>\n\n\n\n

Prof\u00aa. Dr\u00aa. Alice Fernandes Alfieri<\/p>\n\n\n\n

Prof\u00aa. Dr\u00aa. Michele Lunardi<\/p>\n\n\n\n

M\u00e9dica Veterin\u00e1ria: <\/strong><\/p>\n\n\n\n

Juliana Torres Tomazi Fritzen<\/p>\n\n\n\n

T\u00e9cnicos de Laborat\u00f3rio:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Marcos Vinicius de Oliveira <\/p>\n\n\n\n

Renilda Calabrio Cianca <\/p>\n\n\n\n

Fone (43) 3371-4068<\/p>\n\n\n\n

Exames oferecidos<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Sorol\u00f3gico (material: soro)<\/strong><\/p>\n\n\n\n

IBR (Rinotraqueite Infecciosa Bovina)<\/p>\n\n\n\n

ELISA<\/p>\n\n\n\n

Soroneutraliza\u00e7\u00e3o<\/p>\n\n\n\n

BVD (Diarr\u00e9ia Viral Bovina)<\/p>\n\n\n\n

Soroneutraliza\u00e7\u00e3o<\/p>\n\n\n\n

Parvov\u00edrus canino<\/p>\n\n\n\n

HI \u2013 Inibi\u00e7\u00e3o da Hemaglutina\u00e7\u00e3o<\/p>\n\n\n\n

Rotav\u00edrus animal \/ humano<\/p>\n\n\n\n

ELISA Policlonal<\/p>\n\n\n\n

Virol\u00f3gico (material: fezes)<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Rotav\u00edrus – animal \/ humano \/ aves.<\/p>\n\n\n\n

Eletroforese em gel de poliacrilamida (EGPA)<\/p>\n\n\n\n

Coronav\u00edrus bovino<\/p>\n\n\n\n

HeHa \u2013 Hemadsor\u00e7\u00e3o \u2013 elui\u00e7\u00e3o \u2013 hemaglutina\u00e7\u00e3o<\/p>\n\n\n\n

Parvov\u00edrus canino<\/p>\n\n\n\n

HA \u2013 hemadsor\u00e7\u00e3o<\/p>\n\n\n\n

Outros exames:<\/p>\n\n\n\n

Isolamento viral<\/p>\n\n\n\n

Herpesv\u00edrus (IBR) a partir de fragmentos de \u00f3rg\u00e3os<\/p>\n\n\n\n

Flaviv\u00edrus (BVD) a partir de fragmentos de \u00f3rg\u00e3os<\/p>\n\n\n\n

Rotav\u00edrus a partir de fezes<\/p>\n\n\n\n

Auto-vacina para papilomatose \u2013 material papilomas<\/p>\n\n\n\n

P.C.R.<\/p>\n\n\n\n

            Herpesv\u00edrus a partir de fragmentos de \u00f3rg\u00e3os<\/p>\n\n\n\n

            Rotav\u00edrus fezes<\/p>\n\n\n\n

            Cinomose sangue com anticoagulante (Heparina \/ EDTA), urina<\/p>\n\n\n\n

            Flaviv\u00edrus a partir de fragmentos de \u00f3rg\u00e3os<\/p>\n\n\n\n

 Envio de material:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Soro: <\/strong>deve estar preferencialmente “limpo” (sem a presen\u00e7a de hem\u00e1cias), estocado em frasco limpo e seco, mantendo sob refrigera\u00e7\u00e3o ou congelado e identificados. volume: 1 \u2013 2ml.<\/p>\n\n\n\n

Fezes<\/strong>: deve estar estocada em frasco de filme fotogr\u00e1fico, luvas de palpa\u00e7\u00e3o ou saco pl\u00e1stico bem fechado e identificado, mantidas em refrigera\u00e7\u00e3o. As fezes poder\u00e3o estar separadas individualmente por animal e\/ ou na forma de pool representativos de um lote. Volume: 10 gr (\u00b1 1 pote ou filme).<\/p>\n\n\n\n

Fragmentos de \u00f3rg\u00e3os<\/strong>: deve esta estocado individualmente em sacos pl\u00e1sticos ou luvas de palpa\u00e7\u00e3o, de forma que um \u00f3rg\u00e3o n\u00e3o entre em contato com outro manter sob refrigera\u00e7\u00e3o (n\u00e3o congelar). Caso haja a possibilidade devem ser mantidos em l\u00edquido de Valee, e neste cano n\u00e3o precisam ser individualizados.<\/p>\n\n\n\n

Volume: fragmentos de \u00b1 10 cm pegando as \u00e1reas pr\u00f3ximas das les\u00f5es.<\/p>\n\n\n\n

Obs.: pode-se enviar o feto abortado inteiro em saco pl\u00e1stico e refrigerado.<\/p>\n\n\n\n

Papiloma<\/strong>: dever\u00e1 ser feita uma assepsia no local antes e depois de colher o papiloma, manter sob refrigera\u00e7\u00e3o ou congelados, em saco pl\u00e1stico ou frasco limpo. Volume: 3 \u2013 5gr (6 papiloma pequenos ou 3 grandes) por animal. Pode ser mandado tamb\u00e9m na forma de pool.<\/p>\n\n\n\n

Obs.: Enviar o material em caixa de isopor com gelo recicl\u00e1vel ou gelo comum (dentro de saco pl\u00e1stico bem fechado para n\u00e3o vazar) em quantidade suficiente para refrigerar o material (dist\u00e2ncia x tempo) at\u00e9 sua chegada ao laborat\u00f3rio.<\/p>\n\n\n\n

Lacrar a caixa de isopor com fita crepe identificada com flecha o lado “para cima”e que o material \u00e9 perec\u00edvel.<\/p>\n\n\n\n

Todo o material enviado dever\u00e1 vir acompanhado da hist\u00f3ria cl\u00ednica e qual o exame solicitado.<\/p>\n\n\n\n

Os exames poder\u00e3o ser pagos via ordem de pagamento e os laudos enviados por fax ou correio.<\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

\n
Zoonoses<\/strong><\/div><\/summary>
\n

Docentes:<\/strong> Prof\u00aa. Dr\u00aa. Eloiza Teles Caldart<\/p>\n\n\n\n

M\u00e9dica Veterin\u00e1ria:\u00a0<\/strong>Kerlei Cristina Medici\u00a0<\/p>\n\n\n\n

T\u00e9cnico de Labort\u00f3rio:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

<\/p>\n\n\n\n

Fone: (43) 3371-5956<\/p>\n\n\n\n

Exames oferecidos:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Bacteriol\u00f3gico de H2<\/sub>O<\/strong> \u2013 colheita de \u00e1gua para an\u00e1lise Bacteriol\u00f3gica:<\/p>\n\n\n\n

O Laborat\u00f3rio de Zoonoses dever\u00e1 ser contatado previamente para o fornecimento de frascos est\u00e9reis e \u00edntegros, necess\u00e1rios \u00e0 colheita das amostras de \u00e1gua.<\/p>\n\n\n\n

As amostras dever\u00e3o ser enviadas para o Laborat\u00f3rio preferencialmente \u00e0s segundas-feiras.<\/p>\n\n\n\n

Tempo entre colheita e entrada no laborat\u00f3rio:<\/p>\n\n\n\n

At\u00e9 24 horas para \u00e1gua tratada;<\/p>\n\n\n\n

At\u00e9 12 horas para \u00e1gua n\u00e3o tratada;<\/p>\n\n\n\n

At\u00e9 6 horas para \u00e1gua polu\u00edda.<\/p>\n\n\n\n

Manter o frasco com a amostra em recipiente isot\u00e9rmico (caixa de isopor) com gelo.<\/p>\n\n\n\n

Local da colheita:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Torneira:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Abrir a torneira e deixar correr \u00e1gua durante 5 (cinco) minutos, fechar e desinfetar a boca da torneira.<\/p>\n\n\n\n

Torneira de metal: utilizar \u00e1lcool e flambar.<\/p>\n\n\n\n

Torneira de pl\u00e1stico: usar desinfetante (hipoclorito de s\u00f3dio).<\/p>\n\n\n\n

Antes de colher a amostra, deixara correr a \u00e1gua, retirar o papel, abrir o frasco e colher rapidamente 100 ml de \u00e1gua (metade do frasco de 250 ml), sem tocar em nada e fechar o frasco.<\/p>\n\n\n\n

Identificar a amostra: data, local, nome de quem efetuou a colheita.<\/p>\n\n\n\n

Acondicionar a amostra em caixa isot\u00e9rmica com gelo e encaminhar ao laborat\u00f3rio.<\/p>\n\n\n\n

Po\u00e7os semi-artesianos e artesianos:<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Colher da torneira de descarga (na sa\u00edda do po\u00e7o);<\/p>\n\n\n\n

Deixar correr a \u00e1gua por 10 minutos;<\/p>\n\n\n\n

Outros passos seguir o recomendado para torneira.<\/p>\n\n\n\n

Po\u00e7os de len\u00e7ol fre\u00e1tico e reservat\u00f3rios (caixas d\u2019\u00e1gua):<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Colher a amostra com aux\u00edlio de balde de metal limpo e flambado;<\/p>\n\n\n\n

Verter a \u00e1gua do balde para o frasco, sem tocar qualquer superf\u00edcie;<\/p>\n\n\n\n

Po\u00e7os: a colheita pode ser efetuada com o frasco com fio longo o suficiente para tocar a \u00e1gua, previamente preparado;<\/p>\n\n\n\n

Em reservat\u00f3rios, colher longe das bordas, procurar colher em sua \u00e1rea mais central;<\/p>\n\n\n\n

Os outros passos seguir o recomendado para torneira.<\/p>\n\n\n\n

Rios, Lagos, A\u00e7udes e outros<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Submergir o frasco, segurando a tampa pelo fio, para que a boca do frasco fique contr\u00e1ria \u00e0 correnteza;<\/p>\n\n\n\n

Procurar colher distante da margem;<\/p>\n\n\n\n

Os outros passos seguir o recomendado para de torneira.<\/p>\n\n\n\n

Pesquisa para Criptosporidiose (material: fezes):<\/strong><\/p>\n\n\n\n

Fezes de animais, colhidos no reto ou rec\u00e9m defecadas, 10g de fezes acondionadas, sob refrigera\u00e7\u00e3o, em frasco de filme fotogr\u00e1fico, frascos, luvas de palpa\u00e7\u00e3o;<\/p>\n\n\n\n

Trazer refrigerado, n\u00e3o congelar;<\/p>\n\n\n\n

Identificar individual do material: data, idade, sexo, esp\u00e9cie, nome ou n\u00famero de identifica\u00e7\u00e3o, todo material dever\u00e1 vir acompanhado de hist\u00f3ria cl\u00ednica.<\/p>\n\n\n\n

Pesquisa de Toxoplasmose e Neosporose<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

(material: Feto Abortado, Fragmento de \u00f3rg\u00e3o, soro e Sangue fresco com anticoagulante):<\/p>\n\n\n\n

Aborto: colher o feto abortado com luvas descart\u00e1veis, acondicion\u00e1-lo em saco pl\u00e1stico dentro de caixa isot\u00e9rmica com gelo e envi\u00e1-lo ao laborat\u00f3rio.<\/p>\n\n\n\n

Se necess\u00e1rio, acondicion\u00e1-lo em geladeira o mais breve o poss\u00edvel, e em hip\u00f3tese alguma deve ser congelado, para envi\u00e1-lo.<\/p>\n\n\n\n

Material para necr\u00f3psia enviar o animal ou fragmentos de \u00f3rg\u00e3os: c\u00e9rebro, cora\u00e7\u00e3o, f\u00edgado, rim e placenta.<\/p>\n\n\n\n

Material para isolamento de agente: fragmentos de c\u00e9rebro (medula), cora\u00e7\u00e3o, f\u00edgado, rim e placenta.<\/p>\n\n\n\n

Sorologia: Imunofluresc\u00eancia Indireta, enviar:<\/p>\n\n\n\n

Soro: 1 a 2 ml refrigerado, se colhido no dia ou congelado;<\/p>\n\n\n\n

Sangue: 4 a 5 ml de sangue refrigerado colhido no dia (cauda leucocit\u00e1ria com anticoagulante).<\/p>\n\n\n\n

Identifica\u00e7\u00e3o individual do material: data, idade, sexo, esp\u00e9cie, nome ou n\u00famero de identifica\u00e7\u00e3o, todo material dever\u00e1 vir acompanhado de hist\u00f3ria cl\u00ednica.<\/p>\n\n\n\n

Pesquisa de Leishmaniose<\/strong>:<\/p>\n\n\n\n

Sorologia: Imunofluresc\u00eancia Indireta, enviar<\/p>\n\n\n\n

Soro: 1 a 2 ml refrigerado, se colhido no dia ou congelado;<\/p>\n\n\n\n

Sangue: 4 a 5 ml de sangue refrigerado colhido no dia com anticoagulante.<\/p>\n\n\n\n

Biopsia de pele: material fragmento de pele<\/p>\n\n\n\n

Esfrega\u00e7o de pele em l\u00e2mina de microscopia para exame direto.<\/p>\n\n\n\n

Todo material dever\u00e1 vir identificado segundo itens j\u00e1 colocados anteriormente e acompanhado de hist\u00f3ria cl\u00ednica.<\/p>\n<\/div><\/details>\n<\/div>\n\n\n\n

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